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发表于 2022-6-11 07:01:21 | 显示全部楼层
明细胞壁上的糖链和细胞外的粘多糖具有金属吸附的活性不同的金属离子被不同的多糖吸附可以提高细胞抗重金属的能力。第二阶段是指微生物累积这一主动过程它仅发生在活细胞内。当活细胞生存在环境中时它可以通过多种机理包括运输以及细胞内外的吸附来“提高”本身的金属含量。已提出的金属运送的机制有脂类过度氧化、复合物渗透、载体协助、离子泵等。微生物累积过程是通过微生物的新陈代谢伴随着能量的消耗进行的它比微生物吸着慢得多[2]。

关于微生物吸着这一相对简单的过程在此不做过多的讲述而微生物累积目前来看已在生产中应用很多而且收到了良好的效果。它是指重金属进入细胞后通过“区域化作用”分布在细胞内的不同部位被封闭为低毒的形式。近年来这方面研究最多的是重金属硫蛋白MT这种蛋白质中的巯基可以和重金属离子形成稳定的复合物沉积下来。

金属硫蛋白是1957年Margoshe和Vallee在研究镉的生化功能时发现的它是一种低分子量、富含半胱氨酸但不含芳香族氨基酸和组氨酸的金属结合蛋白广泛存在于哺乳动物、植物和微生物中并且能够在胁迫条件下诱导产生。金属离子通过和MT中半胱氨酸的巯基结合形成生物学上稳定的形式沉积下来[3]。 目前的研究认为镉可以直接作用于MT基因的启动子诱导MT mRNA的大量表达诱导合成的金属硫蛋白一方面可以螯合一定量的镉形成Cd-MT复合物以降低细胞内的镉浓度另一方面通过自身巯基氧化态/还原态的转换来清除由镉诱发产生的自由基从而减轻镉对生物体的损伤。根据半胱氨酸的含量和结构MT可分为三类即Ⅰ 、 Ⅱ、Ⅲ类前两类是直接的基因产物第Ⅲ类是非翻译的富含半胱氨酸的分子命名为重金属螯合肽其中Ⅰ类MT的Cys排列在N-端和C-端均为Cys-Xaa-Cys X为任何其他氨基酸残基 Ⅱ类MT在N-端为Cys-Cys、 Cys-Xaa-Xaa-Cys或Cys-Xaa-Cys的排列在C端为Cys-Xaa-Cys的排列[4]。

随着分子生物学研究手段的发展采用人工合成物对重金属进行吸附已经成为一种快速、有效的方法。它是基于细菌表面展示系统原理用基因重组的方法将外源性多肽或蛋白与细菌表面的蛋白(如外膜蛋白、鞭毛蛋白)融合 以正确的构象和方向插入并停留在细菌外膜功能性地表达在细菌表面。借助于细胞表面展示技术可以将具有络合重金属功能的外源蛋白与LamB、 OmpA、 PhoE等结构相似、均以一系列β折叠跨膜的外膜蛋白结合这类外膜蛋白中裸露于细胞外的肽段形成的环以夹心方式插入外源性序列这样形成的结构不影响蛋白质的总体构型但能功能性地表达外源蛋白。已发现人工合成Hexa-His能插入信号序列N-末端和a-凝集素序列一半的C-末端之间使合成产物表达于细胞表面[5] 从而提高吸附重金属的能力。

1.2重金属的转化作用

微生物能通过氧化还原、甲基化和去甲基化作用转化重金属将有毒物质转化成无毒或低毒物质。其中微生物对汞的转化作用最常见且研究得最清楚它主要有两种作用方式汞的甲基化和将Hg2还原为Hg0。

甲基汞的脂溶性高易和蛋白质中的巯基结合其毒性是无机汞的100倍但甲基汞易于挥发因此推测微生物合成甲基汞是一种解毒机制。甲基钴胺素是能转移负碳离子的甲基基团被公认为在汞甲基化时提供甲基供体但目前还不清楚甲基化是酶促过程还是非酶促

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过程本文暂且将其归入代谢类型。

微生物通过有机汞裂解酶催化有机汞的碳汞键断裂再由依赖NADPH和FAD为辅酶的二聚体酶汞还原酶把无机Hg2还原为Hg0使之挥发离开菌体细胞这一过程是可诱导的有机汞裂解酶和汞还原酶的底物都是其酶的诱导剂。研究表明与运输汞有关的基因有MerA、MerB、MerC、MerD、MerP、MerR和MerT它们位于同一个操纵子上。其中MerA编码汞还原酶该酶常以二聚体形式在细胞质内与内膜呈松疏的结合MerB编码有机汞裂解酶但它的定位尚未确定MerT和MerC编码有关Hg2吸收的内膜蛋白MerR编码调节蛋白MerP编码位于周质空间结合Hg2的蛋白MerD是革兰氏阴性菌中除MerR之外的第二个调节基因它们均编码调节蛋白结合于操纵子的OP处来调节mer操纵子上的结构基因。当无Hg2存在时调节蛋白结合于操纵子的OP处阻止RNA聚合酶与DNA结合。当Hg2存在时 Hg2与MerR蛋白结合但Hg2和MerR蛋白的复合物并不离开DNA而是在OP处使DNA发生扭曲、折叠使RNA聚合酶与DNA结合激活MerT、MerP、MerC、MerA、MerB转录前三个蛋白组成Hg2吸收、转运系统将Hg2运至MerA作用部位从而高效、快速地将Hg2还原成Hg0 降低Hg2对细胞的毒性。

1.3输出系统对重金属的作用

某些二价金属离子由于没有足够的还原酶所需的NADPH又缺乏甲基化或其他共价修饰机制 因此不能像Hg0那样挥发出细胞但可以借助于输出系统完成这一任务其中有三种系统RND、 CDF和P-ATPase介导二价金属阳离子排出细胞[6]  目前这种输出机制主要用于抗镉和抗铜系统。

在细菌中发现两种不同的抗镉系统一种是在金黄色葡萄球菌中发现的革兰氏阳性菌对Cd2和Zn2外排的cadCA阳离子输出系统它是一种P-ATPase通过水解ATP提供能量将重金属离子泵出细胞这种运输系统比较简单在此不做赘述。另一种是在产碱杆菌pMOL30质粒上发现的革兰氏阴性菌对Cd2、 Zn2、 、 Co2输出的czc系统[7]  czc系统编码RND驱动的跨膜输出子CzcCBA和CDF型的CzcD[8] 其中CzcCBA由CzcA、 CzcB和CzcC组成,CzcA是位于细胞质膜的质子-阳离子反向运输子 CzcB是位于周质空间的膜融合蛋白 CzcC则位于细胞外膜它带有前导序列它的原肽在跨过细胞质膜的过程中被加工成熟CzcD对CzcCBA的表达起到调节的作用[9 10]。从上可以看出这两个系统除了都输出Cd2外在输出机制、底物专一性组成特点等方面都有很大的差异。

目前细菌中有两种不同质粒控制的抗铜系统研究得比较清楚[11]。一种是在丁香假单胞菌中发现的cop系统另一种是在大肠杆菌中发现的pco系统。丁香假单胞菌的cop系统中copA和copB行使部分抗铜活性当copC和copD存在时才能行使全部的抗铜活性。CopA和copC是周质空间蛋白 copB是外膜蛋白 copD蛋白的功能和定位尚不清楚。 Cop的抗铜机制是Cu2在周质空间被copA和copC结合在细胞质中Cu2被封闭从而使细胞质中游离的Cu2浓度受到控制 Cop系统的调节由copR和copI实现。大肠杆菌中铜的抗性非常特殊 由质粒编码的蛋白因子和染色体编码的蛋白因子共同完成对Cu2的转运、胞内结合和排放调控。 CutA和CutB是染色体编码的Cu2吸收系统染色体编码的CutE和CutF在细胞内参与Cu2的结合染色体基因编码的CutC和CutD负责Cu2的排放 CutR负责整个操纵子的调节。在正常的生

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理调节下染色体上的Cut操纵子负责Cu2的转运和保持在Cu2过量的情况下质粒上pco操纵子开始转录其上有pcoA、 pcoB、 pcoR和pcoC四个基因蛋白质序列分析可知pcoR是典型的磷酸转移两组分调节系统的传感器蛋白因为质粒上无相应的编码反应调节器蛋白的基因所以推测可能在染色体上。 Cu2过量时 PocC结合胞内的Cu2通过pcoA和pcoB与pcoC和pcoD构成四组分排放系统将Cu2排出胞外。
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2020鼠小禄【普通成就】百日新生【普通成就】

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fsgccjvxrjvxdtu
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发表于 2022-6-15 01:05:18 | 显示全部楼层
好想看hhh
但屈指西风几时来,又不道流年暗中偷换。
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